實(shí)驗(yàn)室里,一臺DYCP電泳儀正平穩(wěn)運(yùn)行,凝膠上條帶清晰分離——這看似簡單的操作背后,實(shí)則暗藏諸多細(xì)節(jié)。從凝膠濃度的精準(zhǔn)配比,到電泳電壓的毫厘把控,任何一個環(huán)節(jié)的疏忽都可能導(dǎo)致實(shí)驗(yàn)失敗。本文將拆解DYCP瓊脂糖水平電泳儀的核心操作步驟,手把手教你避開常見誤區(qū),讓實(shí)驗(yàn)效率與結(jié)果質(zhì)量雙提升。

一、設(shè)備檢查與試劑準(zhǔn)備
操作前需確認(rèn)
DYCP瓊脂糖水平電泳儀主體無裂紋、電極無氧化,緩沖液槽無滲漏,槽蓋與電極接線接觸良好。推薦搭配電源,確保電壓調(diào)節(jié)功能正常。試劑需使用新鮮配制的1×TAE或1×TBE緩沖液,核酸染料需按說明書比例稀釋,避免使用過期或受污染試劑。
二、凝膠制備與參數(shù)選擇
根據(jù)DNA片段大小選擇瓊脂糖濃度:大片段(>10kb)用0.8%凝膠,中片段(1-10kb)用1.0%-1.2%,小片段(<1kb)用1.5%-2.0%。以DYCP-31DN為例,稱取對應(yīng)質(zhì)量瓊脂糖加入錐形瓶,加入緩沖液后微波爐中高火加熱30秒,搖勻后繼續(xù)加熱20秒至溶液透明無顆粒。冷卻至50-60℃時加入染料,倒入膠室托盤(厚度3-4mm),室溫靜置25-30分鐘至全部凝固。
三、上樣與電泳參數(shù)設(shè)置
凝膠凝固后,垂直拔出梳子,將膠板放入電泳槽,確保加樣孔靠近負(fù)極。倒入緩沖液至液面沒過凝膠2-3mm,用移液器吸取預(yù)混6×Loading Buffer的樣品,斜角45°對準(zhǔn)加樣孔中心緩慢推液,每孔上樣量建議10-15μL。儀器支持高通量上樣,可按從左到右順序依次加樣,邊緣孔加入DNA Marker作為分子量對照。蓋好槽蓋后連接電極線,開啟電源選擇恒壓模式,電壓設(shè)置為50-70V,電泳時間40-60分鐘,待溴酚藍(lán)遷移至凝膠2/3處時停止。
四、結(jié)果觀察與設(shè)備維護(hù)
電泳結(jié)束后關(guān)閉電源,取出凝膠置于凝膠成像系統(tǒng),調(diào)整紫外燈波長至254nm或302nm,拍攝并保存圖像。實(shí)驗(yàn)后需用蒸餾水沖洗電泳槽、膠室托盤和梳子,去除殘留凝膠,晾干后存放于干燥通風(fēng)環(huán)境。定期檢查電極狀態(tài),若出現(xiàn)氧化生銹,用400目砂紙打磨確保電場均勻穩(wěn)定。